Анализ мокроты: правила сбора и подготовки¶
Анализ мокроты — лабораторное исследование отделяемого дыхательных путей, направленное на выявление возбудителей респираторных инфекций (в первую очередь микобактерий туберкулёза), определение клеточного состава и диагностику заболеваний лёгких. Правильный сбор материала напрямую влияет на достоверность результата: загрязнённая или неправильно хранящаяся проба приводит к ложным отрицательным или сомнительным выводам.
¶Показания к исследованию
Мокроту направляют на анализ при подозрении на:
- туберкулёз лёгких (бактериоскопия по Цилю–Нильсену, посев на среду Лёвенштейна — Йенсена, ПЦР);
- пневмонию и бронхит с продуктивным кашлем;
- бронхоэктатическую болезнь;
- абсцесс и рак лёгкого (цитологическое исследование);
- грибковые и паразитарные поражения лёгочной ткани.
¶Подготовка к сбору мокроты
Забор материала проводят утром, натощак, до чистки зубов и приёма пищи. За сутки до сдачи рекомендуется увеличить питьевой режим (тёплая вода, щелочные минеральные воды без газа), что облегчает отхождение мокроты. Накануне не следует употреблять молоко и продукты, усиливающие слюноотделение. При сухом кашле врач может назначить отхаркивающие средства или ингаляции с солевым раствором за 1–2 дня до исследования.
¶Правила сбора
- Вымыть руки с мылом.
- Открыть стерильный одноразовый контейнер (пробирку), не касаясь внутренней поверхности крышки и стенок.
- Сделать 2–3 глубоких вдоха, задерживая дыхание на 5–6 секунд, затем энергично откашляться.
- Сплюнуть мокроту в контейнер, избегая попадания слюны и слизи из носоглотки. Объём пробы — не менее 3–5 мл.
- Плотно закрыть крышку, подписать (Ф. И. О., дата, время сбора).
- Доставить в лабораторию в течение 1–2 часов при комнатной температуре. При необходимости хранения — в холодильнике при +2…+8 °C не более 24 часов (для ПЦР — до 72 часов при −20 °C).
При отсутствии продуктивного кашля допускается сбор натощак утренней мокроты после полоскания рта кипячёной водой. В стационаре при затруднённом отхождении материала проводят индукцию: паровые ингаляции с гипертоническим солевым раствором, вибрационный массаж грудной клетки, постуральный дренаж.
¶Оценка качества пробы
Лаборант оценивает пробу визуально. Пригодной считается мокрота слизисто-гнойного или гнойного характера с зеленоватым или желтоватым оттенком, содержащая плотные комочки. Непригодны пробы, состоящие преимущественно из слюны или жидкой слизи — они подлежат возврату и повторному забору.
¶Основные методы исследования
| Метод | Что выявляет |
|---|---|
| Микроскопия мазка (Циля–Нильсена) | Кислотоустойчивые палочки (МБТ) |
| Посев на питательные среды | Вид возбудителя, чувствительность к антибиотикам |
| ПЦР | ДНК возбудителя, в т. ч. при малом количестве бактерий |
| Цитология | Атипичные клетки при онкозаболеваниях |
| Микроскопия по Граму | Бактериальная флора, грибы |
¶Противопоказания и ограничения
Сбор мокроты не проводят во время менструации (риск контаминации), при выраженном кровохарканье без назначения врача. Детям младшего возраста материал собирают путём аспирации из трахеи после стимуляции кашля.
¶Частые ошибки
- Сбор мокроты после чистки зубов и завтрака — пробы загрязняются слюной и остатками пищи.
- Использование нестерильной посуды.
- Длительное хранение при комнатной температуре (более 2 часов) — микрофлора изменяется, результат искажается.
- Недостаточный объём пробы (менее 3 мл) — снижает вероятность обнаружения возбудителя.
¶Результаты
В норме мокрота содержит клетки эпителия дыхательных путей, макрофаги, единичные лейкоциты. Патологические примеси — эритроциты,大量 лейкоцитов, кислотоустойчивые бактерии, атипичные клетки — указывают на заболевание. Отрицательный результат бактериоскопии не исключает туберкулёз: при малом количестве бактерий в мазке назначают посев и ПЦР.